Madame Ta...
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54000 Nancy
France
Née le 17/02/1985
Nationalité : Française et libanaise.
2010 – 2014
Etudiante
de doctorat en Biologie et santé (école doctorale Biose)– Université de
Lorraine, Nancy, France.
2009–2010
Master 2 de recherche spécialité Biologie
et santé – Université de Lorraine, Nancy, France.
2008 – 2009
Maitrise en biochimie et biologie
moléculaire – Université de Lorraine, Nancy, France.
2007 – 2008
Master 2 en Pharmacologie & Cosmetologie–
Université de Saint esprit de kaslik (USEK), Kaslik, Liban.
2005 – 2006
Maitrise en Biochimie – Université
libanaise, Beyrouth, Liban.
2016 – à ce jour
Directrice
de laboratoire de diagnostique moléculaire, Centre médicale AYA, Beyrouth,
Liban.
2016 – à ce jour
Ingénieur
de recherche au laboratoire de Pharmacologie, Faculté de médecine, Université
américaine de Beyrouth, Beyrouth, Liban.
2010 – 2014
Stage de doctorat, Effet d’Interleukine-24
sur la progression de cycle cellulaire, survie, apoptose et des mécanismes
moléculaires sur des différents modèles des lignées cancéreuses. Sous la co-direction de Pr. Ali Dalloul et Béatrice
Faivre. Laboratoire d’ immunology & Centre de Recherche en Automatique de
Nancy (CRAN) UMR 7039 – Université de Lorraine , Nancy, France.
2010 – 2014
Enseignement des travaux pratiques enMicrobiologie moléculaire, Faculté de
sciences, Université de Lorraine, Nancy, France.
2009 – 2010
Stage deMASTER 2. Development d’une nouvelle technique de sur-expression
lentivirale du gène d’intérêt PPAR-γ (receptors activated by the peroxisome
proliferators) dans les chondrocytes et
les fibroblasts synoviaux dans le but d’application
in vivo dans des modèles d’arthropathie. Laboratoire de
physiopathologie et pharmacologie articulaire, sous la direction de Pr. Jean Yves Jouzeau– Université
de Lorraine, Nancy, France.
2008 – 2009
Stage demaîtrise en biologie moléculaire et biochimie. La régulation des enzymes impliquées dans le métabolisme de
pyrophosphate inorganique dans les
chondrocytes stimulés par TGF – beta-1. Laboratoire de physiopathologie et pharmacologie
articulaire, sous la direction de Pr. Jean Yves Jouzeau – Université de Lorraine,
Nancy, France.
2005 – 2006
Stage demaîtrise en biochimie. Etude de l’effet des ondes électromagnétiques
sur l’expression et l’activité la protéine de choc thermique Dnak dans la
bactérie Esherishia Coli. Laboratoire de biologie moléculaire, Université
libanaise, Beyrouth, Liban.
• Nader Hadife, Christophe
Nemos, Jean-Pol Frippiat,
Tala Hamade,
Aurore Perrot, Ali Dalloul. Interleukin (IL)-24 –mediates apoptosis in
human B-cells through early activation of cell cycle arrest followed by late
induction of the mitochondrial apoptosis pathway. Leuk Lymphoma. 2013
Mar;54(3):587-97
•
Tala Hamade, Arnaud BIANCHI, Sylvie SEBILLAUD, Patrick NETTER,
Jean-Yves JOUZEAU and Frédéric CAILOTTO. Inorganic
Phosphate (Pi) modulates the expression of key regulatory proteins of the
inorganic pyrophosphate (PPi) metabolism in TGF-β1-stimulated
chondrocytes. Biomed Mater Eng. 2010;20(3):209-15.
•
Poster
2009 – 2010Tala Hamade, Arnaud BIANCHI, Sylvie
SEBILLAUD, Patrick NETTER, Jean- Yves JOUZEAU and Frédéric CAILOTTO. Inorganic
Phosphate (Pi) modulates the expression of key regulatory proteins of the
inorganic pyrophosphate (PPi) metabolism in TGF-β1-stimulated
chondrocytes. PLIC
(Journées lorrains de l’ingénierie de cartilage), Nancy, France.
•
Microbiologie: Culture, identification et
isolation des bactéries et des virus ; culture virale et bactérienne,
transduction virale, production des protéines virales, production des vecteurs
viraux; purification des plasmides (maxiprep), production des protéines recombinantes
proteins dans les cultures bactériennes, , ultracentrifugation and ultrafiltration
des virus; transformation batériennes, antibiogramme, préparation des mileux de
culture liquide ou sur agar.
•
Therapie génique et biologie
cellulaire: Clonage
des gènes dans les cellules des mammifères et expression protéique; isolation
et culture des cellules primaires ; fabrication des lignées cellulaires stables; contrôle
d’expression des gènes dans les cellules; Fragmentation d’ADN par des enzymes
de restriction ; mutagènèse dirgée ; modification, réparation et
ligation d’ADN ; Méthylation d’ADN
et des protéines ; transfections des cellules par électroporation,
lipofectamine, précipitation par le phosphate de calcium, transduction virale; FISH
tests (Leica bio systems); Caryotypage (Ikaros system); préparation et stockage
des organes, biopsies et des cellules dans
l’azote liquide.
•
Biochimie et biologie
moléculaire:
Etude d’activité enzymatique; préparation des tampons; dosage acide- base; chromatographie
en couche mince (CCM); test de toxicité MTT; dosage colorimetrique ; mise au
point et validation des protocoles de
PCR, Reverse transcriptase-PCR, PCR en
temps réel, PCR quantitative en temps réel; extraction d’ADN & ARN
à partir des cellules, fluides humains, tissue frais ou en parraffines, des os, des dents et d’autres; purification, élution et
précipitation des acides nucléiques ; dosage des acides nucléiques (Nanodrop
2000 and Qubit); puces d’ADN, ARN & protéines; Northern blot; Western
blot ; extraction, purification et dosage des protéines; ELISA; mutagènese
dirigée PCR; Blast et détérmination des
amorces ; éléctrophorèses sur gel en polyacrylamide ou agarose; immunofixation ;
contrôle d’expression des gènes en
utilisant des ARN antisense; caryotype
moléculaire ; CGH ; affimétrix ; séquençage de Sanger (ABI prism
3300): interprétation des protocoles IVD et de recherche ; test
RFLP et MLPA.
•
Cytométrie en flux: Cell sorting; analyse des
populations cellulaires ; analyse et détéction des différents types des
leucémies ; Test à l’Annexin V/PI; Etude de cycle cellulaire et
progression en utilisant le CFSE ou le PE, mise au point des protocoles
d’identification des cellules.
•
Histochimie et immunomarquage:
marquage des
noyaux par DAPI; préparation des biopsies et incision à l’aide de
microtome ; marquage éosine et hématoxyline, préparation des blocs des
biospsies en paraffines ; immunomarquage des cellules & des tissues;
microscopie confocale; microscopie à fluorescence.
•
Informatique: Analyse des logiciels de
bio-infomatique; blast, logiciel beckman coulter 5000 ; restriction
mapper ; internet technologies (OS); Microsoft Office (Power Point, Word,
Excel) ; language C++.
Langues : Français (courant),
anglais (avancé), arabe (courant) et italien (moyen).
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